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发表于 2025-5-25 05:48
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一、前言
每一个生命个体都是由无数精妙的生物分子共同组成的。而其中的DNA就像是生命的蓝图,DNA中的每一段特定序列,即我们所称的基因,各自承担着特定的生物学功能。它们共同调控着生物体的生长、发育、繁殖等一系列复杂的生命过程。然而,并非所有基因都是完美的,有时候,基因中的一点小小改变,就可能导致疾病的产生。但如果我们能够像编辑文字一样编辑这些基因,那我们就有可能修复这些错误,治疗疾病,甚至创造出新的生命形式。这个想法并非遥不可及。在21世纪的今天,一种名为"基因编辑"的技术正在逐渐实现这个梦想,它正在深刻地改变我们对生命的理解和认知。
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自1970年以来,基因工程已经成为一种在生物体中引入新遗传成分的主要手段。但这项技术有一个显著的缺点:DNA的插入是随机的,不能精确地将基因定位到生物基因组内的特定位点。这种随机性可能会损害或改变宿主基因组中的其他基因。
为了解决这个问题,科学家们开始研发一系列的基因编辑技术。这些技术不仅能在基因组中插入新的基因,还能精确地将这些基因定位到特定的位置,避免对其他基因的无意干扰。基因编辑技术的出现,使得我们能够从"粗糙"的基因操作,转变为"精细"的基因操作。这一系列突破性的研究不仅提高了基因操作的准确性,也为我们解决遗传疾病和开发新的生物技术提供了更多可能性。
二、基因编辑的原理
基因编辑的原理通常涉及到一种被称为"分子剪刀"(如CRISPR-Cas9,ZFNs或TALENs等)的工具,它可以在DNA链的特定位置将其切断。这个位置是由一段引导RNA(gRNA)确定的,它能够与目标DNA序列精确配对。一旦DNA被切断,细胞的自我修复机制就会启动,试图修复这个断裂。
当DNA双链断裂(DSBs)发生时,细胞会启动一系列复杂的自我修复机制,试图修复这个断裂。这些机制包括同源重组修复(HR)、非同源末端连接(NHEJ)、选择性末端连接(a-EJ)和单链退火修复(SSA)。
同源重组修复(HR)
:同源重组修复(HR)是一种精确的DNA修复机制,但它需要一个同源的DNA模板来指导修复过程。同源模板通常来自于同源染色体或者姐妹染色单体。在基因编辑中,我们可以为人提供一个包含我们希望插入或替换的DNA序列的同源模板。通过精确控制模板的序列,我们就可以实现精确的基因编辑。但需要注意的是,HR机制主要发生在细胞的S期和G2期,因为这两个阶段细胞具有可供参考的姐妹染色单体。因此,在使用HR机制进行基因编辑时,我们通常需要考虑到细胞周期的影响。
非同源末端连接(NHEJ)
:非同源末端连接(NHEJ)可以将断裂的两个DNA末端直接连接起来,而不需要同源性模板。这种机制的优点是可以在任何阶段的细胞周期中进行,而不受细胞分裂阶段的限制。NHEJ的缺点是它不是一个精确的修复机制。在末端连接的过程中,可能会丢失或插入一些核苷酸,导致基因序列的改变。这种改变可能会导致基因的功能丧失或改变,所以NHEJ常常在无法提供同源模板的情况下被用于实现基因的突变和敲除。
选择性末端连接(a-EJ)和单链退火修复(SSA)
:这是两种辅助性的DNA修复机制,它们在特定的条件下被激活。a-EJ是一种不依赖于DNA-PKcs的末端连接机制,通常在非同源末端连接(NHEJ)不能正常工作时被激活。单链退火修复(SSA)则是一种依赖于大量的末端单链切除的修复机制。在SSA过程中,两个断裂的DNA末端会被切除成单链,然后这两个单链会寻找并退火到相同的序列,最后通过切除和连接的方式修复断裂。这两种修复机制都需要对断裂的DNA末端进行大量的切除,以形成单链DNA,这可能会导致一些遗传信息的丢失。因此,它们都不是精确的修复机制。但在基因编辑中,我们可以巧妙地利用这些机制来实现特定基因的突变和敲除。
而在DNA的自我修复过程中,科学家可以利用一种被称为"修复模板"的DNA片段来引导修复过程。这个修复模板包含了科学家想要插入、删除或更改的DNA序列。当细胞的修复机制被激活时,它就会使用这个修复模板来修复DNA断裂。
三、锌指核酸酶技术(ZFN)
锌指核酸酶(ZFN)技术的发展始于20世纪80年代。当时的科学家在非洲爪蟾的调节因子中发现了锌指蛋白(zinc finger protein,ZFP)。这种蛋白能够识别并结合到特定的DNA序列。后来,科学家发现通过改造这些蛋白可以将其与FokI酶结合,产生成为一个能够在特定DNA序列处切割DNA的工具,前者负责识别,后者负责切割DNA。这就是锌指核酸酶。
1、ZFN技术的原理
ZFN由两部分组成:锌指蛋白(ZFP)和FokI内切酶。ZFP是一种DNA结合蛋白,它可以识别并结合到特定的DNA序列。FokI内切酶是一种核酸酶,它可以切割DNA。这两部分结合在一起,形成了一种可以在特定位置切割DNA的工具。
锌指蛋白(ZFP)
:锌指蛋白由一个或多个锌指模块组成,每个模块可以识别并结合到DNA序列上的3个碱基。通过改变锌指模块的数量和类型,可以改变ZFN的识别特异性。例如,如果一个ZFN包含6个锌指模块,那么它可以识别18个碱基的DNA序列。这就使得ZFN能够非常精确地定位到基因组中的特定位置。
FokI内切酶
:FokI内切酶是ZFN的切割部分。它是一种核酸酶,可以在DNA双链上产生切口。然而,FokI内切酶只有在形成二聚体的情况下才能工作。这也就意味着需要两个ZFN分子在相邻的DNA序列上结合,才能形成一个有效的FokI内切酶二聚体,从而切割DNA。
DNA切割和修复
:当ZFN在特定的DNA序列上产生切口后,细胞的DNA修复机制就会启动。这通常会通过两种途径进行:非同源末端连接(NHEJ)或同源重组(HR)。NHEJ是一种错误修复机制,它会在DNA切口处随机添加或删除碱基,从而导致基因突变。HR则是一种精确的修复机制,它需要一个与切口处的DNA序列相匹配的模板,接着按照这个模板精确地修复切口。通过提供一个含有所需变更的DNA模板,科学家们就可以利用HR机制来进行精确的基因编辑。
锌指核酸酶图
(图片来源:Stewart, CN 和 Burris, J. Jr.)
2、ZFN技术的应用
自2001年以来,ZFN已经被广泛应用于各种生物物种的基因编辑。这包括细菌、酵母、植物、昆虫、哺乳动物,甚至包括人类细胞。ZFN技术的一个主要应用是基因敲除,这是通过切割目标基因的DNA序列,然后让细胞的DNA修复机制产生错误,从而使基因失去功能。ZFN也可以用于基因插入,这是通过在目标DNA序列上创建一个切口,然后插入一个新的DNA片段。此外,ZFN还可以用于基因修复,这是通过切割错误的基因序列,然后引导细胞的DNA修复机制使用一个正确的模板来修复错误。
3、ZFN技术的优点和挑战
ZFN的主要优点是其高度的特异性和灵活性。它可以设计成识别并切割几乎任何DNA序列。然而,设计和构建ZFN是一个复杂的过程,需要大量的时间和资源。ZFN也有可能在非目标位置切割DNA,这可能导致不期望的突变。尽管有这些挑战,ZFN仍然是一种强大的基因编辑工具,已经在许多研究和临床试验中显示出巨大的潜力。
四、转录激活样效应因子核酸酶技术(TALEN)
转录激活样效应(Transcription Activator-Like Effector, TALE)核酸酶(Nucleases, TALENs)是一种基因编辑工具,其工作原理与锌指核酸酶(ZFNs)类似,但是它们使用不同的DNA结合蛋白。TALEN是一种人工制造的蛋白质,由两部分组成:一个DNA结合域(TALE)和一个FokI核酸酶。
1、TALE DNA结合域
TALE蛋白是由植物病原体Xanthomonas细菌产生的,它们可以识别并结合到植物基因中的特定序列,进而改变植物的基因表达。TALE蛋白的DNA结合域由多个重复的氨基酸序列组成,每个重复序列由34(或35)个氨基酸组成,可以识别并结合一个DNA碱基。这种结构使得TALE蛋白可以高度特异地识别并结合到特定的DNA序列。TALE基序串联成决定靶向性的DNA识别模块通过与FokⅠ结构域连接,就形成了TALEN结构。
2、TALEN技术的优点和挑战
TALENs的DNA识别模块由一系列的转录激活样效应物(TALE)基序组成,每个基序可以识别并结合一个DNA碱基。这种一对一的识别模式使得TALENs能够非常精确地定位到基因组中的特定位置。此外,TALENs使用的FokI核酸酶与ZFNs中的相同,这也保证了TALENs有与ZFNs相当的切割效率。
当然,TALENs也存在一些局限性。首先,由于TALENs的尺寸要大于ZFNs,因此它们在某些应用中可能会受到限制,例如,较大的尺寸可能会影响到TALENs在细胞中的传递效率。其次,TALENs的DNA识别模块包含大量的重复序列,这可能会增加在大肠杆菌中组装TALENs编码基因的难度。然而,这些问题可以通过各种策略来解决,例如使用特殊的组装方法或改进的传递系统。
五、成簇规律间隔短回文重复序列-相关核酸酶技术(CRISPR-Cas)
CRISPR-Cas(成簇规律间隔短回文重复序列-相关核酸酶)系统是一种在细菌和古菌中发现的自然免疫机制,用于防御病毒和外源质粒。目前这个系统已经被广泛应用于基因编辑。
CRISPR-Cas系统主要由两个组成部分构成:CRISPR序列和Cas蛋白。
CRISPR序列
:CRISPR是一段DNA序列,由短的重复序列(repeat)和间隔序列(spacer)组成。重复序列高度保守,而间隔序列则来源于过去入侵的病毒或质粒,因此是特异的。
Cas蛋白
:Cas蛋白是一种核酸酶,能够切割DNA或RNA。Cas蛋白的种类很多,其中最著名的是Cas9蛋白,被广泛用于基因编辑。
CRISPR-Cas系统的工作过程可以分为三个阶段:
适应阶段
:当病毒或质粒入侵时,细菌或古菌会从入侵者的基因中切割出一段DNA,然后插入到自己的CRISPR序列中,形成新的间隔序列。
表达阶段
:当同样的病毒或质粒再次入侵时,细菌或古菌会将CRISPR序列转录成RNA(称为crRNA)。这些crRNA含有来自间隔序列的部分,因此可以识别入侵者的基因序列。
干扰阶段
:crRNA会引导Cas蛋白找到并切割入侵者的基因,从而防止入侵者的复制。
CRISPR-Cas系统的原理
:
在CRISPR-Cas9系统中,科学家们通常将crRNA和另一种名为tracrRNA的RNA被设计成一个单一的导向RNA(sgRNA)。sgRNA可以引导Cas9蛋白精确地切割目标基因。
设计sgRNA
:首先,需要设计一个sgRNA,它的目标序列与你想要编辑的基因序列相配对。sgRNA通常由一个20个核苷酸的目标序列和一个与Cas蛋白结合的骨架序列组成。
sgRNA和Cas蛋白的结合
:然后,sgRNA会结合到Cas蛋白上,形成一个sgRNA-Cas复合体。在这个复合体中,sgRNA负责识别目标DNA,Cas蛋白负责切割DNA。
DNA识别和切割
:sgRNA-Cas复合体会在细胞中寻找与sgRNA目标序列配对的DNA序列。一旦找到,Cas蛋白就会在这个地方切割DNA,产生一个双链断裂。
DNA修复
:细胞会启动自身的DNA修复机制来修复这个双链断裂。如果在双链断裂发生的地方提供一个含有所需突变的同源模板,那么在修复过程中就会将这个突变插入到基因中,从而实现精确的基因编辑。
CRISPR-Cas系统的优点是它的操作简单,特异性高,可以在任何生物体内实现精确的基因编辑。然而,它也有一些缺点,比如可能产生非特异性切割,或者在修复过程中产生意外的突变。
小结
基因编辑技术已经在生物科学研究和应用中起到了革命性的作用。从早期的锌指核酸酶(ZFN)和转录激活样效应因子核酸酶(TALEN)技术,到现在广泛应用的CRISPR-Cas系统,基因编辑技术的发展不仅提高了我们对生命过程的理解,也为治疗遗传疾病、改良农作物和开发新的生物技术提供了强大的工具。虽然这些技术都有各自的优点和挑战,但是它们的出现无疑已经极大地推动了生物科学的进步。相信在未来,随着基因编辑技术的进一步发展和优化,我们期待能够看到更多的基因编辑应用,从而更好地服务于人类社会。
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