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我的实验设计是验证死细菌与细胞的结合我用了带FITC的直标荧光抗体来标记死细菌,用带APC的直标抗体来标记细胞。
我昨天想做一个抗体的预实验确定抗体最佳使用量,做一个抗体滴定。抗体储备液是5mg/ml,我设置了0、1、2、4、8、12ug/ml的浓度组,准备根据染色指数来选择。
我是选择100ul的体系,先用50ul重悬1E8的细胞量,再加入5 ul 1%的BSA避光15min封闭死细菌.(但是我没有离心去除1%BSA)
然后再将含有对应浓度的抗体稀释到50ul,加入到上一管中,冰上孵育30min .
结束后直接加1mlPBS混匀,然后离心去上清,重复一遍洗涤,加500ulPBS上机检测。
但是检测出来没有荧光,和空白组没有差别,我想问问我这个实验过程有些什么问题啊?我改进一下,求求各位大佬指点
还有一个问题是,我检测的是细胞与死细菌结合,我想问一下我需要染死细胞嘛,染死细胞就会染上死细菌,死细胞对实验影响很大嘛,我可以不设置这个染色嘛
原文地址:https://www.zhihu.com/question/8017317354 |
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