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保姆级别qRT-PCR从理论知识(△Ct,△△Ct,2^-△△Ct)到实践操作
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1 背景知识介绍
1.1 qRT-PCR原理与应用
实时定量反转录PCR (Real-Time Quantitative Reverse Transcription PCR)是PCR技术的一项重大发展,它能够对PCR过程中每个周期产生的产物进行可靠的检测和定量检测。在引入寡核苷酸探针(qPCR引物)后,使得这种技术成为可能,寡核苷酸探针被设计用于在目标序列内杂交。由于Taq聚合酶的5'核酸酶活性,在PCR过程中探针的切割可以用来检测目标特异性产物的扩增 [1]。
定量逆转录聚合酶链反应(Quantitative reverse transcription polymerase chain reaction),也称为RT-qPCR,用于检测和定量RNA [2]。在qPCR中,扩增产物的数量在每个PCR反应周期使用荧光值被测量。利用的底物或者模板是cDNA (complementary DNA, cDNA),而cDNA是Total RNA(总RNA)或mRNA首先转录合成。然后将cDNA用作qPCR或实时PCR反应(qPCR)的模板,RT-qPCR用于多种应用,包括基因表达分析、RNAi验证、微阵列验证、病原体检测、基因检测和疾病研究等,是非常常见和通用的一种生物科学实验技术。
对于qRT-PCR称呼有不同的形式,但总体上来说成为实时定量反转录聚合酶链式反应(Real-Time Quantitative Reverse Transcription PCR)可能精细一些,毕竟qPCR仪器在采集数据的时候就是一种实时荧光数据收集,当然并不否认定量逆转录聚合酶链反应的称呼是错误的。
1.1 cDNA
cDNA是一种由mRNA逆转录而来的DNA(有单/双链两种情况),通常用于研究基因表达和克隆。cDNA是单链还是双链得根据实际情况,例如RT-PCR, 3'或5' RACE,我们只使用单链cDNA(第一链cDNA),其它情况如构建表达载体,qRT-PCR等是双链。一般情况下,cDNA它是在体外经过逆转录后与RNA互补的DNA链(可以参见转录试剂盒的说明书),但是与基因组的DNA复杂序列不一样,因为cNDA来自于mRNA,因此cDNA只有外显子,因为mRNA是通过DNA转录而来,内含子序列或者绝大部分内含子序列已经被丢弃(这原理就是mRNA的剪切作用)。
(图1 cDNA合成示意图)
1.2 qRT-PCR反应
qRT-PCR反应主要包含四步:首先是双链cDNA结合染料的嵌入;其次是32P探针的标记;接着是用荧光染料标记探针;最后是记录荧光值。
这里主要是运用到Taqman实验技术,该方法利用taqdna聚合酶的5'端内切酶活性,在PCR过程中切割寡核苷酸探针,从而产生可检测信号。探针在其5'端被荧光标记,并且在其3'端通过化学修饰不可扩展。
(图2 qRT-PCR检测基本原理图)
1.3 qRT-PCR专业术语(Nomenclature)解读
基线(Baseline):被定义为PCR周期,其中报告荧光信号正在积累,但低于仪器的检测极限。
ΔRn(时间点荧光增量):是每个时间点荧光信号的增量,ΔRn值与循环数关系(S型)。
阈值(Threshold)是根据基线可变性选择的任意荧光水平,检测到高于阈值的信号被认为是实信号,可用于定义样本的阈值周期(Cycle threshold, Ct)。阈值可以对每个实验进行调整,使其在所有图中都处于指数放大区域。
阈值周期(Cycle threshold, Ct)是定义为报告荧光大于阈值的分数PCR循环数。Ct是实时PCR的基本原理,是产生准确和可重复数据的重要组成部分(相对表达量的直接数值,可以认为是最关键数值,平时大家在qRT-PCR中直接关注的数值)。
(图3 实时荧光定量反转录PCR工作示意图)
2 定量qRT-PCR实操
2.1 qRT-PCR布板
我们以96孔板,6个生物学重复,4个基因,内参以β-Actin为例进行布板:
表1 qRT-PCR布板
2.2 qRT-PCR上样
qRT-PCR加样的体系具体参考试剂公司提供的SYBR qRT-PCR提供的试剂说明书,但是我们一般要准备的是引物(上游引物 & 下游引物)以及cDNA模板和ddH2O,在此我们以SYBR mix,10 μL体积为例进行加样。
表2 SYBR Mix qRT-PCR加样体系
2.3 qRT-PCR上机
qRT-PCR的扩增程序类似与RT-PCR,主要包含变性-退火-延伸三步,qRT-PCR特殊的一点是在延伸(退火/延伸-两步法糅合在一起)进行了荧光数据的采集,以及多了最后一步的溶解曲线数据采集(仪器默认设置)。
表3 qRT-PCR扩增程序
2.4 数据计算
qRT-PCR的数据计算通用规则是2^-△△Ct计算规则|:
即:
△Ct
=Gene Ct – β-Actin Ct;
△△Ct
=△Ct -
参考△Ct
(一般选择对照组△Ct为参考)
下边以一个对照组和一个处理组(Treat),使用Excel进行计算为例:
表4 qRT-PCR定量数据处理
表中数据解释:
Gene Ct
即基因采集到的循环阈值,有的仪器上显示Cq(q前边原理以讲解),β-Actin原理与Gene Ct一样;
△Ct
=gene Ct -β-Actin Ct;
参考△Ct
=NC △Ct均值;△△Ct=△Ct- 参考△Ct;相对表达量即2^-△△Ct:Excel输入方法“=power(2,-△△Ct)”(注意数值就是G列数值取负数)或输入“=2^-△△Ct”,
^
是输入法在英文状态下同时按住shift+6(6的上边就有^)即可;
t-test:在这里采用的非配对t检验,Excel输入方法:
选择检验函数:找到excel的函数fx(BCC处),然后选择 “TTEST”(图4红框标记)
(图4 excel中t-test检验的选择方式)
(图5 选择需要选择检验的两组数据。F3:F8是对照组,F9:F14是处理组,tails=2表示双尾,即不知道显著性的情况下,type=2一般我理解为非配对的t检验模式,当然图中也有注解)
t-test检验数值=8.04444E-13,即小于0.05,两组数据具有统计学差异。
2.5 图形化数据
这里就不再讲解了,常规作图,1直接使用Excel;2使用origin;3使用GrapdhPAD。
2.6 结束。
(
爱自己!!!做科研!!!
每文格言“村上春树曾在书里写道:"不管全世界所有人怎么说,我都认为自己的感受才是正确的,无论别人怎么看,我绝不打乱自己的节奏,喜欢的事自然可以坚持,不喜欢的怎么也长久不了。”如果有用,关注楼主GBhouse,点赞+讨论是博主持续更新的动力!!!)
原文地址:https://zhuanlan.zhihu.com/p/658249648
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